(1)成脂誘導分化:
1)誘導方法:收集待檢的 hUCMSO,按照1×103cm2接種到12孔板中靜置培養,至到細胞100%甚至過度融合時,吸去10%FBS的 DMEM/F12培養基,加入成脂分化誘導培養液,每3天換液1次,誘導培養14天后,4%多聚甲醛固定30分鐘后染色,顯微鏡下觀察拍照。
2)檢測方法(油紅0染色)成脂肪誘導的過程中,造血干細胞存儲細胞在胞質中不斷有滴的累積,并不斷的增加變大,zui后整個細胞的胞質中都是油滴。油紅O染色的方法是對油滴的染色的一種方法。
(2)成骨誘導分化
1)誘導方法:收集待檢的 hUCMSC,按照5×101m2接種到12孔板中靜置培養,至細胞60%~70%融合狀態時,吸去10%FBS的 DMEMF2培養基,加入成骨分化誘導培養液,每3天換液1次,誘導培養21天后,4%多聚甲醛固定30分鐘后染色,顯微鏡下觀察拍照。
2)檢測方法:(茜素紅染色)成骨誘導過程中鈣離子以鈣鹽的方式沉淀下來,形成“鈣結節”,造血干細胞存儲細胞茜素紅和鈣發生顯色反應,產生一種深紅色的帶色化合物,這樣成骨誘導的細胞外沉積的鈣結節也就被染成深紅色。
(3)成軟骨誘導分化:
1)誘導方法:收集待檢的 hUCMSC,調整細胞濃度為1.6×107ml,造血干細胞存儲細胞取5山接種12孔板中,靜置于37℃,5%CO2培養箱中培養2小時,緩慢加入成軟骨分化培養基靜置培養,每3天換液1次,培養14天后,4%多聚甲醛固定、石蠟包埋軟骨小球病理切片,脫蠟后染色,顯微鏡下觀察拍照。
2)檢測方法:(阿利辛藍染色)檢測軟骨細胞分泌基質中的葡萄糖胺聚糖,可使軟骨中硫酸軟骨素、硫酸膠質素等主要成分呈現藍色。